Películas comestibles de mezclas poliméricas de quitosano, pectina y almidón de yuca

Autores/as

  • Tamara Lorena Costa Universidade Federal Rural do Semi-Árido, Mossoró
  • Ricardo Henrique Lima Leite Universidade Federal Rural do Semi-Árido, Mossoró
  • Edna Maria Mendes Aroucha Universidade Federal Rural do Semi-Árido, Mossoró
  • Francisco Klebson Gomes Santos Universidade Federal Rural do Semi-Árido, Mossoró

DOI:

https://doi.org/10.18378/rvads.v15i4.6713

Palabras clave:

Películas comestibles, Propiedades de barrera, Duración

Resumen

Los materiales poliméricos no biodegradables se han convertido en un problema debido a su largo tiempo de degradación en el medio ambiente. Así, los estudios muestran interés en el desarrollo de películas poliméricas y mezclas de estas como materiales funcionales en las más diversas áreas, especialmente por sus características como biocompatibilidad, biodegradabilidad y no toxicidad. Por lo tanto, el objetivo fue desarrollar y caracterizar películas comestibles producidas por mezclas poliméricas, compuestas por polisacáridos naturales, con el objetivo de su uso como recubrimientos comestibles para frutas. Se desarrollaron siete películas poliméricas mediante la técnica de casting: película 1 (Quitosano), película 2 (Pectina), película 3 (Fécula de yuca), película 4 (Quitosano + Pectina), película 5 (Quitosano + Fécula de yuca), película 6 (Pectina + Almidón de yuca) y película 7 (Quitosano + Pectina + Almidón de yuca). Todos presentaron superficies homogéneas y sin separación de fases. En cuanto a las propiedades ópticas, todas obtuvieron alta luminosidad, siendo las más opacas las del quitosano, presentando L * 77.40 ± 0.28 (4). En cuanto las propiedades barrera, los valores de solubilidad fueron menores en los que contenían quitosano debido a su insolubilidad en agua, 22% para 1 y 18% para 5. Las películas formadas por las mezclas proporcionaron una reducción en la tasa de permeación del agua sin comprometer sus características, como 4 y 5, con una tasa de 14,15 g.m-2.h-1 y 20,43 g.m-2.h-1, respectivamente.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

AGUIRRE - LOREDO, R. Y.; RODRÍGUEZ - HERNÁNDEZ, A. I.; MORALES - SÁNCHEZ, E.; GÓMEZ-ALDAPA, C. A.; VELAZQUEZ, G. Effect of equilibrium moisture content on barrier, mechanical and thermal properties of chitosan films. Food Chemistry, v. 196, p. 560–566, 2016. 10.1016/j.foodchem.2015.09.065

ALVES, V. D.; COSTA, N.; COELHOSO, I. M. Barrier properties of biodegradable composite films based on kappa-carrageenan/pectin blends and mica flakes. Carbohydrate Polymers, v. 79, n. 2, p. 269–276, 2010. 10.1016/j.carbpol.2009.08.002

ASTM E96/E80M (1980). Standard test methods for water vapour transmission of materials. Annual Book of Standards.

ASTM D882-91. (1996). Standard test methods for tensile properties of thin plastic sheeting. Annual Book of Standards.

AZEVEDO, V. M.; SILVA, E. K.; PEREIRA, C. F. G.; COSTA, J. M. G. DA; BORGES, S. V. Whey protein isolate biodegradable films: Influence of the citric acid and montmorillonite clay nanoparticles on the physical properties. Food Hydrocolloids, v. 43, p. 252-258, 2015. 10.1016/j.foodhyd.2014.05.027

AZEVEDO, V. M.; BORGES, S. V.; MARCONCINI, J. M.; YOSHIDA, M. I.; NETO, A. R. S.; PEREIRA, T. C.; PEREIRA, C. F. G. Effect of replacement of corn starch by whey protein isolate in biodegradable film blends obtained by extrusion. Carbohydrate Polymers, v. 157, p. 971–980, 2017. 10.1016/j.carbpol.2016.10.046

BARON, R. D.; PÉREZ, L. L.; SALCEDO, J. M.; CÓRDOBA, L. P.; SOBRAL, P. J. DO A. Production and characterization of films based on blends of chitosan from blue crab (Callinectes sapidus) waste and pectin from Orange (Citrus sinensis Osbeck) peel. International Journal of Biological Macromolecules, v. 98, p. 676–683, 2017. 10.1016/j.ijbiomac.2017.02.004.

BELIBI, P. C.; DAOU, T. J.; NDJAKA, J. M. B.; NSOM, D.; MICHELIN, L.; DURAND, B. A comparative study of some properties of cassava and tree cassava starch films. Physics Procedia, v. 55, p. 220–226, 2014. 10.1016/j.phpro.2014.07.032 .

BOF, M. J.; BORDAGARAY, V. C.; LOCASO, D. E.; GARCÍA, M. A. Chitosan molecular weight effect on starch-composite film properties. Food Hydrocolloids, v. 51, p. 281–294, 2015. 10.1016/j.foodhyd.2015.05.018

BOINOVICH, L.; EMELYANENKO, A. M.; KOROLEV, V. V; PASHININ, A. S. Effect of wettability on sessile drop freezing: when superhydrophobicity stimulates an extreme freezing delay. Langmuir, v. 30, n. 6, p. 1659-1668 , 2014. 10.1021/la403796g

BONILLA, J.; TALÓN, E.; ATARÉS, L.; VARGAS, M.; CHIRALT, A. Effect of the incorporation of antioxidants on physicochemical and antioxidant properties of wheat starch – chitosan films. Journal of Food Engineering, v. 118, n. 3, p. 271–278, 2013. 10.1016/j.jfoodeng.2013.04.008.

CASARIEGO, A.; SOUZA, B. W. S.; CERQUEIRA, M. A.; TEIXEIRA, J. A.; CRUS, L.; DÍAZ, R.; VICENTE, A. A. Chitosan/clay films properties as affected by biopolymer and clay micro/nanoparticles concentrations. Food Hydrocolloids, v. 23, n. 7, p. 1895–1902, 2009. 10.1016/j.foodhyd.2009.02.007

CHILLO, S.; FLORES, S.; MASTROMATTEO, M.; CONTE, A.; GERSCHENSON, L.; DEL NOBILE, M. A. Influence of glycerol and chitosan on tapioca starch-based edible film properties. Journal of Food Engineering, v. 88, n. 2, p. 159–168, 2008. 10.1016/j.jfoodeng.2008.02.002

CIELAB – COMISSÃO INTERNACIONAL DE ILUMINAÇÃO – Sistema de cores, 1976. Disponível em: <http://www.sightgrip.co.uk/bbstest.htm>.

FAKHOURI, F. M.; MARTELLI, S. M.; CAON, T.; VELASCO, J. I.; MEI, L. H. I. Edible films and coatings based on starch/gelatin: Film properties and effect of coatings on quality of refrigerated red crimson grapes. Postharvest Biology and Technology, v. 109, p. 57–64, 2015. 10.1016/j.postharvbio.2015.05.015.

HOSSEINI, S. F.; REZAEI, M.; ZANDI, M.; FARAHMANDGHAVI, F. Development of bioactive fish gelatin/chitosan nanoparticles composite films with antimicrobial properties. Food Chemistry, v. 194, p. 1266–1274, 2016. 10.1016/j.foodchem.2015.09.004.

JARAMILLO, C. M.; SELIGRA, P. G.; GOYANES, S.; BERNAL, C.; FAMÁ, L. Biofilms based on cassava starch containing extract of yerba mate as antioxidant and plasticizer. Starch, v. 67, p. 780–789, 2015. 10.1002/star.201500033 .

LEWANDOWSKA, K.; SIONKOWSKA, A.; GRABSKA, S. Chitosan blends containing hyaluronic acid and collagen. Compatibility behaviour. Journal of Molecular Liquids, v. 212, p. 879–884, 2015. 10.1016/j.molliq.2015.10.047.

LUCHESE, C. L.; FRICK, J. M.; PATZER, V. L.; SPADA, J. C.; TESSARO, I. C. Synthesis and characterization of biofilms using native and modified pinhão starch. Food Hydrocolloids, v. 45, p. 203–210, 2015. 10.1016/j.foodhyd.2014.11.015

MARAN, J. P.; SIVAKUMAR, V.; SRIDHAR, R.; THIRUGNANASAMBANDHAM, K. Development of model for barrier and optical properties of tapioca starch based edible films. Carbohydrate Polymers, v. 92, n. 2, p. 1335–1347, 2013. 10.1016/j.carbpol.2012.09.069.

MENEGUIN, A. B.; CURY, B. S. F.; EVANGELISTA, R. C. Films from resistant starch-pectin dispersions intended for colonic drug delivery. Carbohydrate Polymers, v. 99, p. 140–149, 2014. 10.1016/j.carbpol.2013.07.077.

NESIC, A.; ONJIA, A.; DAVIDOVIC, S.; DIMITRIJEVIC, S; ERRICO, M. E.; SANTAGATA, G.; MALINCONICO, M. Design of pectin-sodium alginate based films for potential healthcare application: Study of chemico-physical interactions between the components of films and assessment of their antimicrobial activity. Carbohydrate Polymers, v. 157, p. 981–990, 2017. 10.1016/j.carbpol.2016.10.054

PASSERONE, A.; SANGIORGI, R.; VALBUSA, G. surface tension and density of molten glasses in the system La2O3 Na2 Si2O5. Ceramurgia International, v. 5. n. 1. p. 18-22, 1979. 10.1016/0390-5519(79)90005-X.

RAMPINO, A.; BORGOGNA, M.; BELLICH, B.; BLASI, P.; VIRGILIO, F.; CESARO, A. Chitosan-pectin hybrid nanoparticles prepared by coating and blending techniques. European Journal of Pharmaceutical Sciences, v. 84, p. 37–45, 2016. 10.1016/j.ejps.2016.01.004.

SELIGRA, P. G.; JARAMILLO, C. M.; FAMÁ, L.; GOYANES, S. Biodegradable and non-retrogradable eco-films based on starch-glycerol with citric acid as crosslinking agent. Carbohydrate Polymers, v. 138, p. 66–74, 2016. 10.1016/j.carbpol.2015.11.041.

SIDDIQI, N.; BHOI, B.; PARAMGURU, R. K.; SAHAJWALLA, V.; OSTROVSKI, O. Slag - graphite wettability and reaction kinetics Part 1 Kinetics and mechanism of molten FeO reduction reaction. Ironmaking & steelmaking, v. 27, n. 5, p. 367-372, 2000. 10.1179/030192300677679.

SONG, X.; ZUO, G.; CHEN, F. Effect of essential oil and surfactant on the physical and antimicrobial properties of corn and wheat starch films. International Journal of Biological Macromolecules, v. 107, p. 1302–1309, 2018. 10.1016/j.ijbiomac.2017.09.114.

THEVARAJAH, J. J.; LEEUWEN, M. P. VAN; COTTET, H.; CASTIGNOLLES, P.; GABORIEAU, M. Determination of the distributions of degrees of acetylation of chitosan. International Journal of Biological Macromolecules, v. 95, p. 40–48, 2017. 10.1016/j.ijbiomac.2016.10.056.

ZAVAREZE, E. DA R.; PINTO, V. Z.; KLEIN, B.; HALAL, S. M. L. EL; ELIAS, M. C.; HERNÁNDEZ, C. P.; DIAS, A. R. G. Development of oxidised and heat-moisture treated potato starch film. Food chemistry, v. 132, n. 1, p. 344–350, 2012. 10.1016/j.foodchem.2011.10.090.

Publicado

2020-10-01

Cómo citar

COSTA, T. L.; LEITE, R. H. L.; AROUCHA, E. M. M.; SANTOS, F. K. G. Películas comestibles de mezclas poliméricas de quitosano, pectina y almidón de yuca. Revista Verde de Agroecologia e Desenvolvimento Sustentável, [S. l.], v. 15, n. 4, p. 391–397, 2020. DOI: 10.18378/rvads.v15i4.6713. Disponível em: https://gvaa.com.br/revista/index.php/RVADS/article/view/6713. Acesso em: 24 nov. 2024.

Número

Sección

INTERDISCIPLINARIAS

Artículos más leídos del mismo autor/a

<< < 1 2 3 > >> 

Artículos similares

También puede {advancedSearchLink} para este artículo.